Efeito antibacteriano in vitro de extratos de própolis argentinos sobre Streptococcus mutans e Actinomyces viscosus
DOI:
https://doi.org/10.7308/aodontol/2017.53.e19Palavras-chave:
Propolis, Streptococcus mutans, Actinomyces viscosus, Microbial sensitivity testsResumo
Objetivo: En el presente estudio, fue investigada la actividad antibacteriana de los Extractos Etanólicos de Propóleos (EEP), coleccionados de diversas regiones (Mendoza, Santiago del Estero, Corrientes) de Argentina, contra Streptococcus mutans ATCC® 35668™ y Actinomyces viscosus ATCC® 15987™(MicroBioLogics Inc., USA.).
Métodos: La identificación del origen geográfico y botánico se basó en el estudio de reconocimiento. El tamizaje fitoquímico de propóleos se llevó a cabo en extractos etanólicos utilizando métodos estándar para identificar los componentes (método colorimétrico de cloruro de aluminio, método colorimétrico de Folin-Ciocalteu, cromatografía en capa fina). El método de difusión en agar (discos y pocillos) y métodos de diluciones en serie (placas y tubos) se llevaron a cabo para evaluar la actividad antibacteriana de los EEP.
Resultados: EEP ejercieron diversos grados de actividad antibacteriana contra S. mutans y A. viscosus, dependiendo de la zona geográfica de recolección de propóleos. El tamizaje fitoquímico mostró que los compuestos bioactivos corresponden a compuestos fenólicos y flavonoides. El EEP de Tunuyán (Mendoza), donde la vegetación más abundante pertenece a Populus sp., mostró el mayor contenido de compuestos fenólicos (220.92±2.01 mg/g) y flavonoides (30.39±0.25 mg/g) y la más importante actividad antibacteriana entre los EEP estudiados. Por el método de difusión en agar en pocillos, se apreció una alta susceptibilidad con un halo inhibidor de 11,25 ± 4,68 mm y 10,90 ± 4,21 mm frente a S. mutans y A. viscosus, respectivamente. Se observaron valores bajos de Concentración Inhibitoria Mínima y valores mínimos de concentración bactericida contra S. mutans (CIM 0,05 mg/ml - CBM 0,46 mg/ml) seguido de A. viscosus (CIM 0,11 mg/ml - CBM 0,93 mg/ml).
Conclusiones: Los resultados combinados de todos los métodos indicaron que S. mutans es más susceptible a los efectos de EEP que A. viscosus.
Referências
Seidel V, Peyfoon E, Watson DG, Fearnley J. Comparative study of the antibacterial activity of propolis from different geographical and climatic zones. Phytother Res. 2008 Sep;22(9):1256-63.
Wagh VD. Propolis: a wonder bees product and its pharmacological potentials. Adv Pharmacol Sci. 2013;11.
Bankova V, Popova M, Trusheva B. Propolis volatile compounds: chemical diversity and biological activity: a review. Chem Cent J. 2014 May 2;8:28.
Gonsales GZ, Orsi RO, Fernandes Jr A, Rodrigues P, Funari SRC. Antibacterial activity of propolis collected in different regions of Brazil. J Venom Anim Toxins. 2006; 12(2): 276-84.
Muli EM, Maingi JM. Antibacterial activity of Apis mellifera L. propolis collected in three regions of Kenya. J Venom Anim Toxins. 2007;13(3):655-63.
Rezende GP, Pimenta FC, Costa LR. Antimicrobial activity of two Brazilian commercial propolis extracts. Braz J Oral Sci. 2006;5(16):967-70.
Elbaz GA, Elsayad II. Comparison of the antimicrobial effect of egyptian propolis versus New Zealand propolis on Streptococcus mutans and lactobacilli in saliva. Oral Health Prev Dent. 2012;10(2):155-60.
Dziedzic A, Kubina R, Wojtyczka RD, Kabała-Dzik A, Tanasiewicz M, Morawiec T. The antibacterial effect of ethanol extract of polish propolis on mutans streptococci and lactobacilli isolated from saliva. Evid Based Complement Alternat Med. 2013;2013:681891.
Vasconcelos WA, Braga NMA, Chitarra VR, Santos VR, Andrade AL. Bioactive glass-green and red propolis association: antimicrobial activity against oral pathogen bacteria. Nat Prod Chem Res. 2014;2(4):154.
Koo H, Gomes BP, Rosalen PL, Ambrosano GM, Park YK, Cury JA. In vitro antimicrobial activity of propolis and Arnica montana against oral pathogens. Arch Oral Biol. 2000;45(2):141-8.
Yu Q, Lin J, Zulkarjan-Ahmat, Zhao J. Effects of Yili dark bee propolis on oral cariogenic biofilm in vitro. Hua Xi Kou Qiang Yi Xue Za Zhi. 2015 Aug;33(4):343-6.
Smith EG, Spatafora GA. Gene regulation in S. mutans: complex control in a complex environment. J Dent Res. 2012;91(2):133-41.
Vieira DR, Amaral FM, Maciel MC, Nascimento FR, Libério SA, Rodrigues VP. Plant species used in dental diseases: ethnopharmacology aspects and antimicrobial activity evaluation. J Ethnopharmacol. 2014;155(3):1441-9.
Normas IRAM-INTA 15935-1. Productos del Noroeste Argentino. Parte 1: Propóleos en bruto. Primera Edición, 2008a.
Bankova V, Christov R, Kujumgiev A, Marcucci MC, Popov S. Chemical composition and antibacterial activity of Brazilian propolis. Z Naturforsch C. 1995 Mar-Apr;50(3-4):167-72.
Normas IRAM-INTA 15935-2. Productos del Noroeste Argentino. Parte 2: Extractos de propóleos. Primera Edición 2008b.
Silva JFM, Souza MC, Matta SR, Andrade MR, Vidal FVN. Correlation analysis between phenolic levels of brazilian propolis extracts and their antimicrobial an antioxidant activities. Food Chem. 2006;99(3):431-5.
Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventós RM. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu Reagent. Methods Enzymol. 1999;299(1):152-78.
Silva RA, Rodrigues AE, Ribeiro MCM, Custódio AR, Andrade NED, Pereira WE. Características físico-químicas e atividade antimicrobiana de extrato de própolis da Paraíba, Brasil. Ciênc Rural. 2006;36(6):1842-8.
Zampini IC, Cudmani N, Isla MI. Actividad antimicrobiana de plantas medicinales argentinas sobre bacterias antibiótico-resistentes. Acta Bioquím Clín Latinoam. 2007;41(3):385-93.
Salas AL, Ordoñez RM, Silva C, Maldonado L, Bedascarrasbure E, Isla MI, et al. Antimicrobial activity of Argentinean propolis against Staphylococcus isolated of canine otitis. J Exp Biol Agric Sci. 2014;2(2):197-207.
Jorgensen JH, Ferraro MJ. Antimicrobial susceptibility testing: a review of general principles and contemporary practices. Clin Infect Dis. 2009;49(11):1749-55.
Liberio SA, Pereira AL, Dutra RP, Reis AS, Araujo MJ, Mattar NS, et al. Antimicrobial activity against oral pathogens and immunomodulatory effects and toxicity of geopropolis produced by the stingless bee Meliponafasciculata Smith. BMC Complement Altern Med. 2011 Nov 4;11:108.
Drago L, Mombelli B, De Vecchi E, Fassina MC, Tocalli L, Gismondo MR. In vitro antimicrobial activity of propolis dry extract. J Chemother. 2000 Oct;12(5):390-5.
Moreno HZ, Martínez AP, Figueroa J. Efecto antimicrobiano in vitro de propóleos argentinos, colombianos y cubanos sobre Streptococcus mutans ATCC 25175. NOVA. 2007;5(7):70-5.
Kim MJ, Kim CS, Kim BH, Ro SB, Lim YK, Park SN, et al. Antimicrobial effect of Korean Propolis against the mutans streptococci isolated from Korean. J Microbiol. 2011;49(1):161-4.
Gebara ECE, Lima LA, Mayer MPA. Propolis antimicrobial activity against periodontopathic bacteria. Braz J Microbiol. 2002;33(4):365-9.
Teerasripreecha D, Phuwapraisirisan P, Puthong S, Kimura K, Okuyama M, Mori H, et al. In vitro antiproliferative/cytotoxic activity on cancer cell lines of a cardanol and a cardol enriched from Thai Apis mellifera propolis. BMC Complement Altern Med. 2012 Mar 30;12:27.
Araujo MAR, Libério SA, Guerra RNM, Ribeiro MNS, Nascimento FRF. Mechanisms of action underlying the anti-inflammatory and immunomodulatory effects of propolis: a brief review. Rev Bras Farmacogn. 2011;22(1):208-19.
Lozina L, Peichoto M, Acosta O, Granero G. Estandarización y caracterización organoléptica y fisico-quimica de 15 propóleos argentinos. Lat Am J Pharm. 2010;29(1):103-10.
Wang L, Tu YC, Lian TW, Hung JT, Yen JH, Wu MJ. Distinctive antioxidant and antiinflammatory effects of flavonols. J Agric Food Chem. 2006;54(26):9798-804.
Isla MI, Moreno MIN, Sampietro AR, Vattuone MA. Antioxidant activity of Argentine propolis extracts. J. Ethnopharmacol. 2001;76(2):165-70.
Ahn MR, Kumazawa S, Hamasaka T, Bang KS, Nakayama T. Antioxidant activity and constituents of propolis collected in various areas of Korea. J Agric Food Chem. 2004;52(24):7286-92.
