Estabelecimento in vitro de Ceiba rubriflora Carv.-Sobr. e L. P. Queiroz

uma espécie endêmica do vale do rio São Francisco

Autores

  • Anna Luiza Mota Docha Universidade Federal de Minas Gerais, Curso de Engenharia Florestal, Campus Montes Claros. Montes Claros, MG. Brasil. https://orcid.org/0000-0002-2903-4357
  • Leandro Silva Oliveira Universidade Federal de Minas Gerais, Curso de Engenharia Florestal, Campus Montes Claros. Montes Claros, MG. Brasil. https://orcid.org/0000-0003-0800-5001
  • Nayara dos Santos Souza Universidade Federal de Minas Gerais, Curso de Engenharia Florestal, Campus Montes Claros. Montes Claros, MG. Brasil. https://orcid.org/0000-0003-3691-7294
  • Gilvano Ebling Brondani Universidade Federal de Lavras, Curso de Engenharia Florestal. Lavras, MG. Brasil. https://orcid.org/0000-0001-8640-5719

DOI:

https://doi.org/10.35699/2447-6218.2020.24029

Palavras-chave:

Paineira rubi, Mata seca, Conservação de espécie, Micropropagação

Resumo

Ceiba rubriflora é uma espécie nativa da região do médio São Francisco que se encontra em risco crítico de extinção. Em decorrência do endemismo da espécie, a produção de sementes é escassa e a micropropagação apresenta-se como ferramenta para a propagação da espécie. Dessa forma, o objetivo do presente trabalho foi estabelecer in vitro sementes de C. rubriflora após desinfestação com diferentes concentrações de cloro ativo e testar a multiplicação in vitro de brotações apicais em diferentes concentrações de 6-benzilaminopurina (BAP). O estabelecimento in vitro das sementes foi realizado em meio de cultura MS, sendo estas submetidas previamente à desinfestação com hipoclorito de sódio (NaOCl) nas concentrações de 0,0; 0,5; 1,0; 1,5 e 2,5% de cloro ativo. Em condições in vitro, brotações apicais das plântulas germinadas foram utilizadas como explantes para a multiplicação, em meio de cultura MS, suplementado com BAP nas concentrações de 0,0; 1,0 e 2,0 mg L-1. As avaliações foram referentes à sobrevivência das plântulas, à contaminação fúngica e bacteriana e ao número de brotações por explante. A germinação in vitro das sementes foi superior a 98% com taxa de sobrevivência das plântulas maior que 50%. A porcentagem total de contaminação fúngica foi de apenas 2%, isenta de culturas bacterianas. Não houve multiplicação das brotações apicais de C. rubriflora em um único subcultivo in vitro em meio de cultura com BAP. Os resultados demonstram a viabilidade da germinação in vitro de sementes de C. rubriflora para a introdução e posterior processo de micropropagação, abrindo perspectivas para maiores estudos com a espécie.

Referências

Al-Khateeb, W., Bahar, E., Lahham, J.; Schroeder, D. 2013. Regeneration and assessment of genetic fidelity of the endangered tree Moringa peregrina (Forsk.) Fiori using Inter Simple Sequence Repeat (ISSR). Physiol Mol Biol Plants, 19: 157–164. doi: https://doi.org/10.1007/s12298-012-0149-z.

Almeida, L. M. S.; Morais, L. E.; Resende, C. F.; Braga, V. F.; Pereira, P. F.; Silva, R. A. C; Peixoto, P. H. P. 2015. Micropropagation and acclimatization of Aegiphila Verticillata Vell.: an endangered woody species. Revista Árvore, 39: 305-314. doi: https://dx.doi.org/10.1590/0100-67622015000200010.

Aragão, V. P. M.; Navarro, B. V.; da Silva, A. T.; Silveira, V.; Santa-Catarina, C. 2018. Micropropagation of Cariniana legalis (Martius) O. Kuntze, an endangered hardwood tree from the Brazilian Atlantic Forest. Plant Cell Culture & Micropropagation, 13: 41-50. Disponível em: http://pccm.ufla.br/index.php/plantcellculturemicropropagation/article/view/116/60

Brondani, G. E.; Oliveira, L. S. D.; Bergonci, T.; Brondani, A. E.; França, F. A. M.; Silva, A. L. L. D.; Gonçalves, A. N. 2013. Chemical sterilization of culture medium: a low cost alternative to in vitro establishment of plants. Scientia Forestalis, 41: 257-264. Disponível em: https://www.ipef.br/publicacoes/scientia/nr98/cap11.pdf

Carvalho-Sobrinho, J. G.; Queiroz, L. P. 2008. Ceiba rubriflora (Malvaceae: Bombacoideae), a new species from Bahia, Brazil. Kew Bulletin, 63: 649-653. doi: http://dx.doi.org/10.1007%2Fs12225-008-9070-6.

Ceiba in Flora do Brasil 2020 em construção. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. 2019. Disponível em: http://reflora.jbrj.gov.br/reflora/floradobrasil/FB115104.

George, E. F.; Hall, M. A.; De Klerk, G. J. (Ed.). 2008. Plant propagation by tissue culture: volume 1. Springer Netherlands.

Lazarotto, M.; Muniz, M. F. B.; Santos, A. F. 2010. Detection, transmission, pathogenicity and chemical treatment of fungi in Ceiba speciosa seeds. Summa Phytopathologica, 36:134-139. doi: https://doi.org/10.1590/S0100-54052010000200005.

Lazarotto, M.; Piveta, G.; Muniz, M. F. B.; Reiniger, L. R. S. 2011. Adequação do teste de tetrazólio para avaliação da qualidade de sementes de Ceiba speciosa. Semina: Ciências Agrárias, 32, 1243-1250. doi: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2011v32n4p1243

Mahr, D. L. 2009. Some Succulent Trees of Bahia and Minas Gerais, Brazil. Cactus and Succulent Journal, 81: 138-146. doi: https://doi.org/10.2985/015.081.0308.

MMA - Ministério do Meio Ambiente. 2019. Caatinga. Disponível em: https://www.mma.gov.br/biomas/caatinga.

Murashige, T.; Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473-497. doi: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Oliveira, L. S.; Brondani, G. E.; Batagin-Piotto, K. D.; Calsavara, R.; Gonçalves, A. N.; Almeida, M. D. 2015. Micropropagation of Eucalyptus cloeziana mature trees. Australian Forestry, vol. 78, 219-231. doi: https://doi.org/10.1080/00049158.2015.1073211.

Pasqual, M.; Dutra, L. F.; Araujo, A. G.; Pereira, A. R. 2010. Prevenção de Contaminações microbianas na cultura de células, tecidos e órgãos de plantas. 61-161. In: Scherwinski-Pereira, J.E. (Ed.). Contaminações microbianas na cultura de células, tecidos e órgãos de plantas. Embrapa Informação Tecnológica, Brasília, DF, Brasil: Embrapa Informação Tecnológica.

REFLORA - Flora do Brasil 2019 em construção. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. Disponível em: http://floradobrasil.jbrj.gov.br/

Silva, P. P.; Contim, L. A. S.; Freitas, D. V.; Aride, P. H. R.; Santos, A. L. W. 2010. Estabelecimento in vitro de ápices caulinares de sumaúma (Ceiba pentandra L. Gaertn). Scientia Agraria, 11: 437-443. doi: http://dx.doi.org/10.5380/rsa.v11i6.20389.

Stephin, S., Gangaprasad, A., Mathew, S.P. 2019. Enhanced in vitro shoot multiplication of Piper sarmentosum by suppression of apical dominance. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 89: 1-8. doi: https://doi.org/10.1007/s40011-019-01086-w.

Takahashi, E. K. Transferência do gene atacina A para plantas de maracujá amarelo (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) por biobalística. 2002. Tese Doutorado. Piracicaba: Universidade de São Paulo, 137f. Disponível em: http://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/11/11137/tde-03122002-083637/.

Wu, K., Zeng, S., Lin, D., da Silva, J. A. T., Bu, Z., Zhang, J., & Duan, J. 2014. In vitro propagation and reintroduction of the endangered Renanthera imschootiana Rolfe. Plos One, 9: e110033. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110033

Downloads

Publicado

2020-09-25

Edição

Seção

COMUNICAÇÕES CIENTÍFICAS

Como Citar

Estabelecimento in vitro de Ceiba rubriflora Carv.-Sobr. e L. P. Queiroz: uma espécie endêmica do vale do rio São Francisco. (2020). Caderno De Ciências Agrárias, 12, 1-5. https://doi.org/10.35699/2447-6218.2020.24029
Share |

Artigos Semelhantes

1-10 de 326

Você também pode iniciar uma pesquisa avançada por similaridade para este artigo.

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)